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原代神經(jīng)元的磁輔助轉染

更新時間:2021-07-12  |  點擊率:1547

實驗原理

 


磁轉染TM 是一種新穎、簡單而高效的細胞體外或體內(nèi)轉染方法。這項技術利用磁力來驅(qū)動結合了磁性粒子的核酸進入靶細胞,從而使細胞能在幾分鐘之內(nèi)獲得*劑量的RNA或DNA,且各細胞獲得量基本一致。NeuroMag是一個專為初級神經(jīng)細胞和神經(jīng)細胞系的高效率轉染而設計的磁性納米粒子配方,是神經(jīng)科學研究中一種理想的轉染試劑。

 

如今可以非常高效地將各類核酸如DNA、RNA或寡核苷酸轉染進初級神經(jīng)元和永生化神經(jīng)細胞中,特別是原代海馬細胞或皮質(zhì)激素神經(jīng)元細胞。NeuroMag兼容于血清,可以用于瞬時和穩(wěn)定轉染,是一種非常穩(wěn)定,可應用的和僅用于研究目的技術。


實驗試劑

 


1. 分離液:含0.25%D-葡萄糖的HBSS(無鈣,鎂),保持在4°C,現(xiàn)配現(xiàn)用。

 

 

2. 培養(yǎng)基:MEM中加入10%的Nu-血清,15mM的pH值7.2的HEPES,0.45%葡萄糖,1mM丙酮酸鈉,2mM的L-谷氨酰胺,10 IU/ml的青-鏈霉素。

 

3. 營養(yǎng)培養(yǎng)基:MEM中加入2%的B27,15mM的HEPES,葡萄糖0.45%,1mM的丙酮酸鈉,2mM谷氨酰胺。


實驗設備

 


組織培養(yǎng)容器準備:

 

 

1. 將水溶性多聚L-賴氨酸(Sigma公司,P-1520)0.1 mg/mL溶于水中(分裝和存儲在-20°C)。

 

 

2. 將蓋玻片或培養(yǎng)皿用多聚L-賴氨酸覆蓋。

 

 

3. 37°C孵育過夜。

 

 

4. 水沖洗兩次。

 

 

5. 在無菌層流罩中干燥

 


實驗材料

 


海馬神經(jīng)元細胞或神經(jīng)細胞系

 


實驗步驟

 


1. 細胞

 

 

    1) 原代神經(jīng)元細胞:一般來說培養(yǎng)了7至21天的細胞都可以進行實驗,但體外培養(yǎng)天數(shù)(DIV)為10-15天(依據(jù)不同的培養(yǎng)條件)的細胞用來實驗。轉染前24小時更換50%的培養(yǎng)基。

 

 

    2) 細胞系:于轉染實驗的前一天準備。

 

 

2. DNA / NeuroMag復合物的制備

 

 

    1) NeuroMag:渦旋并適量加入至微管中。

 

 

    2) DNA:稀釋數(shù)量的DNA至50~700微升的無血清和補充的培養(yǎng)基中

 

 

    3) 將上述DNA溶液加入到NeuroMag溶液中,渦旋或吹打后在室溫下孵育15至20分鐘。

 

 

3. 轉染

 

 

    1) 將NeuroMag / DNA復合物逐滴添加到培養(yǎng)的細胞(細胞> 10 DIV時,生長于營養(yǎng)培養(yǎng)基中,如果<10DIV,則培養(yǎng)于培養(yǎng)基中),輕拍培養(yǎng)板以確保均勻分布,于15分鐘內(nèi)置于磁板之上。

 

 

    2) 移除磁板。

 

 

    3) 細胞在37°C 標準條件下于CO2 培養(yǎng)箱中培養(yǎng),直到用于評價轉基因表達(24小時至7天)。

 

 

    4) 方法的優(yōu)化

 

 

雖然上述快速方法轉染效率較高,但在特定的細胞系或原代細胞培養(yǎng)中,可能需要優(yōu)化如下幾個參數(shù)以獲得最高的轉染效率:核酸的劑量、NeuroMag與核酸的比例、細胞密度和孵化時間。建議您一次優(yōu)化一個參數(shù)。

 

        a. 優(yōu)化DNA的量

為達到最佳的轉染效率,DNA的量可以增加或減少。重要的是要始終保持不斷優(yōu)化過程中的細胞數(shù)和培養(yǎng)時間。調(diào)整DNA最佳量時需要維持一個NeuroMag與DNA的固定比例(每微克DNA用3.5&mu;g的NeuroMag),在建議的范圍進行調(diào)整。

        b. NeuroMag / DNA比值的優(yōu)化

首先保持一個固定數(shù)量的DNA(根據(jù)您的培養(yǎng)皿中,細胞數(shù)量和以前的優(yōu)化結果),然后在2至5&mu;L的范圍內(nèi)調(diào)整每微克DNA中NeuroMag的量。

        c. 細胞數(shù)量

細胞數(shù)量(密度)也是一個重要的參數(shù),為達到良好的轉染效率,根據(jù)所使用的細胞進行調(diào)整的最佳調(diào)整。合適的細胞密度取決于增長率和細胞的培養(yǎng)條件,同等條件下,較好的細胞融合度比低細胞密度好。

         d. 時間:

尋找轉染與細胞基因活性檢測,如啟動子活性,表達產(chǎn)物等之間的孵育時間,可通過檢測轉染24小時后到7天之間的基因產(chǎn)物來監(jiān)測轉染效率。報告基因如綠色熒光蛋白,&beta;-半乳糖苷酶,堿性磷酸酶或熒光素酶可以用來定量測量基因表達。

    5) 共轉染

在對多個質(zhì)粒DNA進行共轉染時,將每個質(zhì)粒取相同數(shù)量進行混合,再依如上所述條件進行轉染。例如,如果你有兩個DNA質(zhì)粒,則每質(zhì)粒取1微克,再與7&mu;L的NeuroMag混合,進行實驗。

    6) 共轉染的選擇

共轉染只能實現(xiàn)順序轉染,而不能同時進行。因此,一個細胞在轉染質(zhì)粒DNA4小時至24小時以后可以與其他質(zhì)粒DNA再進行轉染。兩步轉染之間可以更換培養(yǎng)基。


注意事項

 


1. DNA和 NeuroMag溶液在使用前應回復至室溫,并輕柔渦旋。每微克DNA使用3.5µL的NeuroMag并實驗需要來進優(yōu)化。

 

 

2. 神經(jīng)細胞系:建議在轉染前一天將細胞培養(yǎng)于玻片上。合適的細胞密度取決于增長率和細胞的條件。在轉染期間細胞不應該少于60%的融合度(細胞覆蓋生長表面的百分比)。

 

 

3. 細胞密度是實現(xiàn)良好的轉染與低毒性的一個重要的參數(shù),合適的細胞密度將取決于增長速度和細胞的培養(yǎng)條件。

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